Научный журнал

Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований

ISSN 1996-3955

ИФ РИНЦ = 0,556

• Авторы
• Резюме
• Файлы
• Ключевые слова
• Литература

Успабаева А.А. 1 Исаева А.У. 1 Бишимбаев В.К. 2

---

1 Шымкентский университет

2 ОФ «Центр солевых технологий»

Микроорганизмы, адаптированные к существованию в экстремальных условиях среды, быстро приспосабливаются к изменениям солености среды. На микрофлору Южного региона Казахстана действуют такие факторы, как высокая засолённость, количественно-качественные характеристики солесодержащего сырья. Образцы проб солесодержащего сырья были отобраны из Джаксы-Клычского месторождения озерных солей и месторождения Бугажайлы Сузакского района Туркестанской области. Образцы солесодержащего сырья, характеризуются как сульфатно-натриевые, галитные, галитно-сульфатные и натриевые соли. Микрофлора солесодержащего сырья отобранного из месторождений Джаксы-Клыч и Бугажайлы состоит из гетеротрофных микроорганизмов в количестве 104 КОЕ/г и энтеробактерий в 103 КОЕ/г. Микромицеты в количестве 103 КОЕ/г выявлены только в пробах солесодержащего сырья Бугажайлы. Было изолировано 10 культур микроорганизмов, доминирующую часть которых составили представители родов – Micrococcus, Bacillus, Pseudomonas. Род Micrococcus представлен тремя доминирующими видами – M. luteus, M. roseus, Micrococcus sp. Энтеробактерии представлены одним видом – Enterobacter sp. Микромицеты представлены родами Aspergillus, Mucor, Penicillium и Fusarium. Изучена галорезистентность изолированных культур микроорганизмов к различным концентрациям NaCl. Показано, что культуры M. luteus, Bacillus sp., Aspergillus sp., Penicillium sp. и Fusarium sp. резистентны к 17–20 % концентрациям солей.

Статья в формате PDF

389 KB

микрофлора

соленость

солесодержащее сырье

1. Балымбетов К.С., Гришаева О.В. Гидробиология реки Сырдарья (нижнее течение) в 2005–2007 гг. // Экология и гидрофауна водоемов трансграничных бассейнов Казахстана. 2008. С. 125–134.

2. Амиргалиев Н.А., Гришаева О.В. Влияние солености вод на распределение макрозообентоса Малого Арала // Вестник сельскохозяйственной науки Казахстана. 2009. № 2 (600). С. 54–58.

3. Завьялов П.О., Арашкевич Е.Г., Бастида И., Гинзбург А.И., Дикарев С.Н., Житина Л.С., Ижицкий А.С., Ишниязов Д.П., Костяной А.Г., Кравцова В.И., Кудышкин Т.В., Курбаниязов А.К., Ни А.А., Никишина А.Б., Петров М.А., Сажин А.Ф., Сапожников Ф.В., Хан В.М., Шеремет Н.А. Большое Аральское море в начале XXI века: физика, биология, химия. М.: Наука, 2012. 229 с.

4. Курбаниязов А.К., Байназаров К.К., Избасаров Б.Ж. Результаты наблюдения гидрологического и гидробиологического состояния Аральского моря (2002–2006 гг.) // Вестник Актобинского университета Дуние. 2009. № 1(14).

С. 92–96.

5. Бухарин О.В., Немцева Н.В. Микробиология биоценозов природных водоемов. Екатеринбург: УрО РАН, 2008. 156 с.

6. Indoitu R., Kozhoridze G., Batyrbaeva M., Vitkovskaya I., Orlovsky N., Blumberg D., Orlovsky L. Dust emission and environmental changes in the dried bottom of the Aral Sea. Aeolian Research. 2015. № 17. Р. 101–115.

7. Krivinogov S. Chapter 4. Changes of the Aral Sea level. In: Micklin P., Aladin N., Plotnikov I. (Eds). The Aral Sea: The Devastation and Partial Rehabilitation of a Great lake. Springer. 2014. Heidelberg: Р. 77–111.

8. Plotnikov I.S., Aladin N.V., Ermakhanov Z.K., Zhakova L.V. Chapter 3. Biological Dynamics of the Aral Sea before Its Modern Decline (1900–1960). In: Micklin P., Aladin N., Plotnikov I. (Eds). The Aral Sea: The Devastation and Partial Rehabilitation of a Great lake. Springer. 2014. Heidelberg. Р. 41–47.

9. Toman M.J., Plotnikov I., Aladin N., Micklin P. and Ermakhanov Z.. Biodiversity, the present ecological state of the Aral Sea and its impact on future development. Acta Biologica Slovenica. 2015. № 58 (1). Р. 45–59.

10. Нетрусов А.И., Егоров М.А., Захарчук Л.М. Практикум по микробиологии. М.: Издательский центр «Академия», 2005. С. 96–242.

11. Connon S.A., Giovannoni S.J. High-throughput methods for culturing microorganisms in very-low-nutrient media yield diverse new marine isolates. Applied and Environmental Microbiology. 2002. № 68 (8). Р. 3878–3885.

12. Определитель бактерий Берджи. 9-е изд.: В 2 т.: пер. с англ. / Под ред. Дж. Хоулта, Н. Крига, П. Снита, Дж. Стейли, С. Уильямса. М.: Мир, 1997. 421 с.

13. Margesin R., Schinner F. Potential of halotolerant and halophilic microorganisms for biotechnology. Extremophiles. 2001. Vol. 5. P. 73–83.

На сегодняшний день сложилась серьезная экологическая ситуация в Южном регионе Казахстана, которые характеризуются наличием целого комплекса экстремальных факторов с усиленным развитием процессов засоления [1, 2]. В результате антропогенных нагрузок на экосистему наблюдается падение уровня моря и осолонение вод, что приводит к высокому росту температурных колебаний и сдвигу фаз температурного режима в толще воды. При этом снижается поступление биогенных элементов в море, низкое содержание биогенных элементов вызывает ограничения развития фотосинтетических процессов и низкую биологическую продуктивность в море [3]. Ухудшается кислородный режим моря за счет уменьшения его фотосинтетического продуцирования и интенсивного потребления на окисление органического вещества, что приводит к формированию зон дефицита кислорода [4, 5].

Повышение солености вод делает невозможным существование аборигенной микрофлоры, что вызывает изменения в количественно-качественном составе фито- и зоопланктона, фито- и зообентоса [6]. Адаптированные к существованию в крайне экстремальных условиях среды, галофильные микроорганизмы быстро приспосабливаются к изменениям солености среды. Данная группа микроорганизмов в природе практически не имеет ни конкурентов, ни антагонистов, поскольку ни одна из других жизненных форм не способна к существованию в условиях высокой концентрации солей [7–9].

Цель исследования: изучение микрофлоры солесодержащего сырья Южного региона Казахстана.

Материалы и методы исследования

Объектами исследования были образцы проб солесодержащего сырья Джаксы-Клычского месторождения (ДКМ) озерных солей и месторождения Бугажайлы (БМ) Сузакского района Туркестанской области (табл. 1). В качестве солесодержащего сырья использовали следующие образцы соли, рапы и ила, отобранные с глубины 0–10 см, 0–20 см, 0–30 см.

Были использованы образцы солесодержащего сырья, характеризующиеся как сульфатно-натриевые, галитные, галитно-сульфатные и натриевые соли. Подготовку образцов для посева проводили стандартными методами [10].

Микробиологическое обследование проводили по общепринятым методикам [11]. Учитывали следующие группы микроорганизмов: общее количество гетеротрофных бактерий, эндобактерий и микромицетов. Для этого использовались следующие питательные среды: МПА, агар Эндо-ГРМ, Чапека. Количество бактерий в образцах определяли методом посева последовательных десятикратных разведений образцов на питательную среду.

Морфолого-культуральные свойства. Для выделения чистых культур использовали бактерии, доминирующие в образцах. Выделение чистых культур осуществляли общепринятыми методами. Морфологию клеток изучали при микроскопии окрашенных по Граму препаратов стандартными методами [12]. Основным критерием для определения различных колоний служила совокупность следующих признаков: пигментация, выделение водорастворимого пигмента, образование внеклеточной слизи, консистенция, размер (мм), наличие воздушного и субстратного мицелия и другие характерные признаки.

Галорезистентность определяли по резистентности к NaCl (г/л среды: 3,0; 5,0; 10,0; 13,0; 17,0; 20,0; 25,0) при посеве бактерий штрихом на чашки, содержащие указанные концентрации NaCl [13].

Статистическая обработка полученных результатов проводилась вычислением среднего арифметического значения и величины стандартного отклонения. Все определения проводились в 3-х и 5-ти кратной повторности. Данные обрабатывались с помощью персонального компьютера IBM «Pentium» на базе пакетов прикладных программ «Excel».

Результаты исследования и их обсуждение

В результате проведения микробиологических исследований было установлено, что количество микроорганизмов в исследуемых образцах зависит от количественно-качественных характеристик солесодержащего сырья (рисунок).

На основании полученных результатов было установлено, что в пробах отобранных на территории Джаксы-Клычского месторождения (рисунок, а) численность гетеротрофных микроорганизмов колеблется в пределах 104 КОЕ/г. Однако в образцах проб № 3 ДКМ и № 8 ДКМ численность гетеротрофных микроорганизмов составила (2,9 ± 0,3)×105 кл/г и (2,7 ± 0,2)×105 кл/г соответственно. Наименьшее количество микроорганизмов сосредоточенно в пробах № 20ДКМ и № 21 ДКМ, где численность гетеротрофных микроорганизмов составила (2,9 ± 0,3)×103 кл/г и (6,8 ± 0,6)×103 кл/г соответственно. Численность энтеробактерий во всех образцах проб колеблется в пределах 103 КОЕ/г. Микромицеты обнаружены только в пробе № 8 ДКМ и № 22 ДКМ, где их численность составила (6,0 ± 0,5)×103 кл/г и (9,8 ± 0,8)×103 кл/г.

В пробах Бугажайлинского месторождения (рисунок, б) наблюдается аналогичная картина, где численность гетеротрофных микроорганизмов колеблется в пределах 104 КОЕ/г, энтеробактерий 103 КОЕ/г, а численность микромицетов в данных пробах увеличивается, по сравнению с образцами, отобранными из Джаксы-Клычского месторождения. В образцах проб № 1 БМ; № 2 БМ; № 4 БМ; № 5 БМ и № 7 БМ численность микромицетов колеблется в пределах 103 КОЕ/г, в пробе № 8 БМ численность данной группы колеблется в пределах 104 КОЕ/г, в пробах № 3 БМ и № 4 БМ микромицеты не обнаружены.

Установлено, что микрофлора солесодержащего сырья во всех образцах состоит из гетеротрофных микроорганизмов в количестве 104 КОЕ/г и энтеробактерий 103 КОЕ/г, а численность микромицетов характеризуется наименьшим количеством, только в пробах БДМ численность микромицетов была в пределах 104 КОЕ/г.

Из исследованных образцов с учетом морфологических и культуральных свойств микроорганизмов было изолировано 10 культур микроорганизмов. Доминирующую часть гетеротрофной микрофлоры, составили представители родов – Micrococcus, Bacillus, Pseudomonas. Род Micrococcus представлен тремя доминирующими видами – M. luteus, M. roseus, Micrococcus sp. Энтеробактерии представлены одним видом – Enterobacter sp. Микромицеты представлены родами Aspergillus, Mucor, Penicillium и Fusarium.

Галорезистентность изолированных культур микроорганизмов определяли по способности расти при различных концентрациях NaCl от 0 до 20 % (табл. 2).

Как следует из представленных данных, установлено, что M. roseus интенсивно растет на среде с 3–10 % NaCl, на среде с 13 % NaCl наблюдается хороший рост, а на среде с 17–25 % NaCl рост отсутствует. Micrococcus sp. интенсивно растет на среде с 3–5 % NaCl, на среде с 10–17 % NaCl растет хорошо, а на среде 20–25 % NaCl наблюдается отсутствие роста. M. luteus и Bacillus sp. интенсивно растут на среде с 0–17 % NaCl, на среде 20 % NaCl наблюдается хороший рост, при увеличении процентного содержания NaCl до 25 % рост отсутствует. Культуры Pseudomonas sp и Enterobacter sp. интенсивно растут на среде с 3–10 % NaCl, при увеличении концентрации NaCl до13–17 % культура Pseudomonas sp. растет хорошо, при дальнейшем увеличении концентрации соли до 20 % и выше рост данной культуры прекращается, а рост Enterobacter sp. подавляется уже на среде с 17–25 % NaCl. Aspergillus sp. интенсивно растет на среде с 3–13 % NaCl, на среде с 17–20 % NaCl наблюдается хороший рост, а на среде с 25 % NaCl рост отсутствует. Mucor sp. на среде с 3–5 % NaCl наблюдается хороший рост, в остальных вариантах рост данной культуры отсутствует. На среде с 3–10 % NaCl Penicillium sp. растет интенсивно, хороший рост наблюдается на среде с 13–17 % NaCl. Fusarium sp. интенсивно растет на среде с 3–5 % NaCl, при увеличении процентного содержания NaCl на 10–13 % наблюдается хороший рост, а при увеличении от 17 % до 25 % рост полностью отсутствует.

Выводы

1. Установлено, что микрофлора солесодержащего сырья отобранных из Южного бассейна Аральского моря и Приаралья, Джаксы-Клычского месторождения озерных солей и месторождения Буга-Джайлы состоит из гетеротрофных микроорганизмов со степенью 104 КОЕ/г и энтеробактерий 103 КОЕ/г, а численность микромицетов характеризуется наименьшим количеством, только в пробах Буга-Джайлинского месторождения численность микромицетов составляет до 104 КОЕ/г.

2. Из исследованных образцов было изолировано 10 культур микроорганизмов. Доминирующую часть гетеротрофной микрофлоры составили представители родов – Micrococcus, Bacillus, Pseudomonas. Род Micrococcus представлен тремя доминирующими видами – M. luteus, M. roseus, Micrococcus sp. Энтеробактерии представлены одним видом – Enterobacter sp. Микромицеты представлены родами Aspergillus, Mucor, Penicillium и Fusarium.

3. В ходе изучения галорезистентности изолированных культур микроорганизмов к различным концентрациям NaCl выявлено, что культуры M. luteus, Bacillus sp, Aspergillus sp., Penicillium sp. и Fusarium sp. являются устойчивыми к 17–20 % NaCl.

Библиографическая ссылка