Современная генетика кур тесно связана с изучением полиморфизма генов, влияющих на рост и развитие птицы. Это обусловлено тем, что мясо кур является важной составляющей рациона человека, поскольку служит источником белка, аминокислот, витаминов и микроэлементов.
В последние годы внимание исследователей обращено к поиску взаимосвязей между полиморфными вариантами различных генов, ответственных за рост и развитие, и показателями продуктивности птицы.
Ген миостатина, благодаря выработке соответствующего белка, влияет на развитие мускулатуры у высших позвоночных негативным образом [1]. Если по каким-то причинам происходит блокировка пути от гена MSTN к мышцам, наблюдается усиленный рост последних. Мутации, приводящие к изменениям последовательности ДНК в различных участках гена MSTN встречаются у ряда животных. У высших позвоночных MSTN тканеспецифичен, его синтез происходит в скелетных мышцах, на которые он и оказывает биологические эффекты [2, 3].
Нуклеотидная последовательность гена миостатина полностью прочитана, а также известно, что этот ген включает в себя три экзона и два интрона [4]. Сейчас особое внимание уделяется обнаружению однонуклеотидных замен (SNP) в смысловых участках миостатинового гена, для того, чтобы выявить их ассоциации с признаками продуктивности [5, 6].
Целью нашей работы было определение влияния типа кормления на скорость роста курочек пушкинской породы в зависимости от генотипа по замене rs313744840 в гене миостатина.
Материалы и методы исследования
Материалом для исследования послужила ДНК, выделенная из крови кур пушкинской породы. Кровь брали с помощью инъекции одноразовым шприцем из подкрыльцовой вены крыла у цыплят в возрасте 3–4 недель и помещали в пробирки объемом 0,5–1,5 мл, содержащие антикоагулянт ЭДТА, который препятствует свертыванию крови, а также обладает консервирующими свойствами. До выделения ДНК образцы хранили в холодильнике при отрицательных температурах, чтобы замораживание жидкой фракции крови привело к разрушению клеточных оболочек. ДНК выделяли по методике с применением для расщепления белков фермента протеиназы К (Сибэнзим, Россия) и дальнейшей очистки с помощью фенола.
При рождении каждый цыпленок помечался специальной крылометкой с индивидуальным номером, который закреплялся за ним на весь период наблюдений. Было сформировано две группы курочек. Одна (n = 40) выращивалась на кормах для бройлеров (корм ПК-5, производство Тосненского комбикормового завода) до возраста 63 дня. Другая группа (n = 64) – на кормах для молодняка кур-несушек (ПК-4, производство ТККЗ). Оба комбикорма относятся к полнорационным кормам. Корм ПК-5 характеризуется повышенным содержанием протеина (до 20 %) и обменной энергии (до 310 ккал в 100 г корма).
Определение живой массы кур проводили путем взвешивания на весах марки «Госметр» в различные периоды жизни: при рождении, в 7, 14, 21, 34, 40, 49, 56, 63 дня. Курочки, выращенные на кормах с повышенным содержанием протеина и обменной энергии, также были взвешены в возрасте 70 дней. А курочки, выращенные на кормах для молодняка кур-несушек, в возрасте 90 дней.
Для определения генотипов использовали полимеразную цепную реакцию (ПЦР) с использованием следующих праймеров: прямой 5’-AAC-CAA-TCG-TCG-GTT-TTG-AC-3’ и обратный 5’-CGT-TCT-CTG-TGG-GCT-GAC-TA-3’) [5]. С их помощью получали один участок экзона 1 миостатинового гена (AF346599). Продукты амплификации обрабатывали ферментом рестрикции HpaII, разрезающим ДНК в определенной точке. Это замена G/A в положении rs313744840 миостатинового гена.
ПЦР проводили на амплификаторе «BioRad» (США) с использованием реакционной смеси следующего состава: 67 мМ трис-HCl pH 8,6, 2,5 мM MgCl2, 16,6 мM NH4OH, 0,125 мМ каждого из дезоксирибонуклеозидтрифосфатов (dATP, dGTP, dCTP, dTTP), 0,5 мкМ прямого и обратного праймеров, 50–100 нг геномной ДНК и 2,5 ед Taq-полимеразы («Сибэнзим», Новосибирск). Общий объем реакционной смеси составлял 10 мкл. Применяли режим, состоящий из 35 циклов: 30 сек – 94 °С, 30 сек – 60 °С, 30 сек – 72 °С.
Фрагменты ДНК разделяли электрофорезом в течение 1 часа при рабочем напряжении 7,5 В/см в ТВЕ буфере (45 мМ трис-борат, 1 мМ ЭДТА). Процесс проводили с использованием 1,5 % агарозного геля, содержащего флуоресцентный краситель бромистый этидий. Смесь после рестрикции вносили в кармашки геля. В качестве маркера, позволяющего оценить длину фрагментов ДНК на геле, использовали pUC19/MspI (Thermo Fisher Scientific). Сигнал фотографировали в системе гель-документации фирмы Кодак.
Статистическую обработку полученных результатов проводили с помощью пакета программ SigmaPlot.
Результаты исследования и их обсуждение
В результате определения генотипов по замене rs313744840 в гене миостатина и расчета взаимосвязи между генотипами и живой массой птицы в разные периоды жизни были обнаружены следующие закономерности.
Оказалось, что курочки с генотипом АА по замене rs313744840 в гене MSTN, выращиваемые на кормах для бройлеров, начали достоверно (p < 0,05) отличаться от своих сверстниц с генотипом AG с возраста 28 дней (табл. 1). Это преимущество в росте сохранялось до конца периода кормления кормом с повышенным содержанием протеина и обменной энергии.
Таблица 1
Живая масса в разные периоды жизни курочек пушкинской породы, выращенных на кормах для бройлеров, в зависимости от генотипа по замене rs313744840 в гене миостатина
Возраст |
Живая масса (г) в зависимости от генотипа по rs313744840 в гене MSTN |
P |
||
АА (n = 14) |
AG(n = 18) |
GG(n = 8) |
||
Первые сутки |
41,271 ± 0,903 |
40,161 ± 0,789 |
42,225 ± 1,022 |
0,315 |
7 дней |
68,186 ± 2,168 |
62,868 ± 1,471 |
70,438 ± 3,588 |
0,045 |
14 дней |
123,286 ± 4,9091 |
114,333 ± 3,0621 |
125,938 ± 8,425 |
0,203 |
21 день |
211,386 ± 7,5851 |
189,275 ± 5,8181 |
204,438 ± 15,7 |
0,120 |
28 дней |
317,571 ± 9,4181 |
279,750 ± 9,0111 |
302,625 ± 21,227 |
0,049 |
34 дня |
448,429 ± 9,7011 |
396,05 ± 11,3181 |
413,688 ± 23,067 |
0,016 |
40 дней |
608,538 ± 13,4451 |
537,8 ± 14,2911 |
562,875 ± 28,443 |
0,012 |
49 дней |
853,385 ± 19,9751 |
753,45 ± 18,9241 |
798,250 ± 29,06 |
0,005 |
56 дней |
1008,385 ± 22,4831 |
897,526 ± 21,4201 |
953,113 ± 30,170 |
0,005 |
63 дня |
1170,583 ± 28,6601 |
1040,368 ± 26,1171 |
1120,857 ± 31,758 |
0,006 |
70 дней |
1277,75 ± 28,5851 |
1161,474 ± 25,4671 |
1200,333 ± 31,218 |
0,016 |
Примечание. 1 – достоверно отличающиеся группы, p < 0,05.
При анализе птицы, выращенной на корме для молодняка кур-несушек, следует отметить, что для курочек тенденция к преимуществу по живой массе у гомозигот АА по замене rs313744840 в гене миостатина наблюдалась до 40-дневного возраста, но отмеченные различия не были достоверными (табл. 2). В 49 дней эти курочки в среднем имели самую низкую живую массу 747,636 ± 50,805 г (n = 10). К возрасту 90 дней эта группа незначительно обогнала гетерозигот AG по живой массе, а от гомозигот GG практически не отличалась.
Таблица 2
Живая масса в разные периоды жизни курочек пушкинской породы, выращенных на кормах для молодняка кур-несушек, в зависимости от генотипа по замене rs313744840 в гене миостатина
Возраст |
Живая масса (г) в зависимости от генотипа по rs313744840 в гене MSTN |
P |
||
АА (n = 10) |
AG(n = 38) |
GG(n = 16) |
||
Первые сутки |
40,033 ± 0,679 |
40,514 ± 0,558 |
41,469 ± 0,965 |
0,527 |
7 дней |
66,150 ± 2,203 |
63,408 ± 1,339 |
63,931 ± 2,359 |
0,659 |
14 дней |
113,444 ± 4,534 |
110,145 ± 2,638 |
109,406 ± 3,668 |
0,811 |
21 день |
201,050 ± 6,205 |
191,295 ± 4,365 |
193,031 ± 6,629 |
0,576 |
28 дней |
292,500 ± 12,960 |
282,00 ± 6,175 |
287,344 ± 8,509 |
0,699 |
34 дня |
410,455 ± 13,508 |
397,263 ± 8,194 |
400,067 ± 13,134 |
0,742 |
40 дней |
556,091 ± 19,069 |
539,308 ± 10,018 |
536,438 ± 14,453 |
0,680 |
49 дней |
747,636 ± 50,805 |
767,513 ± 12,170 |
761,800 ± 15,801 |
0,827 |
56 дней |
954,400 ± 32,472 |
945,128 ± 20,320 |
961,000 ± 28,967 |
0,904 |
63 дня |
1174,727 ± 37,291 |
1154,333 ± 19,218 |
1138,500 ± 35,171 |
0,764 |
90 дней |
1425,182 ± 50,701 |
1397,897 ± 24,629 |
1416,938 ± 38,430 |
0,841 |
Если сравнить курочек с генотипом АА по замене rs313744840 в гене миостатина, выращенных на разном корме, то можно отметить, что достоверно большую живую массу они имели лишь в возрасте 34 дня и 40 дней. В остальные периоды наблюдений достоверных различий не отмечено, хотя средние показатели живой массы у курочек, выращенных на бройлерных кормах были выше (табл. 3).
Таблица 3
Сравнительный анализ динамики роста живой массы у курочек пушкинской породы с генотипом АА по замене rs313744840 в гене миостатина, выращенных на кормах разного типа
Возраст |
Живая масса (г) курочек с генотипом АА по rs313744840 в гене MSTN |
Значение t-критерия Стьюдента |
|
Выращенных на корме для молодняка кур-несушек (n = 10) |
Выращенных на корме |
||
Первые сутки |
41,271 ± 0,903 |
40,033 ± 0,679 |
1,10 |
7 дней |
68,186 ± 2,168 |
66,150 ± 2,203 |
0,66 |
14 дней |
123,286 ± 4,909 |
113,444 ± 4,534 |
1,47 |
21 день |
211,386 ± 7,585 |
201,050 ± 6,205 |
1,05 |
28 дней |
317,571 ± 9,418 |
292,500 ± 12,960 |
1,56 |
34 дня |
448,429 ± 9,7011 |
410,455 ± 13,508 |
2,28(р < 0,05) |
40 дней |
608,538 ± 13,4451 |
556,091 ± 19,069 |
2,25 (p < 0,05) |
49 дней |
853,385 ± 19,975 |
747,636 ± 50,805 |
1,94 |
56 дней |
1008,385 ± 22,483 |
954,400 ± 32,472 |
1,37 |
Примечание. 1 – достоверно отличающиеся группы, p < 0,05.
Кормление является важной составляющей в организации содержания и выращивания молодняка кур. В первые месяцы жизни цыплята не только интенсивно растут, но и происходит формирование всех систем их организма. Для того, чтобы генетический потенциал особи раскрывался полностью, кормление на стадии выращивания должно быть полноценным.
Пушкинская порода кур относится к породам мясо-яичного типа. От нее возможно получать достаточное количество мяса без потери яйценоскости, что делает представителей этой породы привлекательным объектом для птицеводов-любителей [7].
Объем мышечной массы у высших позвоночных связан с работой гена миостатина (MSTN). Миостатин – белок, подавляющий рост и дифференцировку мышечной ткани в организме. Он выступает в качестве негативного регулятора массы скелетных мышц и действует по принципу обратной связи. При возрастании мышечной массы увеличивается секреция миостатина, что тормозит дальнейший рост мышц [1].
Природные мутации, которые снижают количество миостатина и/или подавляют его функции, были выявлены у человека, ряда сельскохозяйственных животных и птиц. Было найдено большое количество SNP в этом гене, влияющих на скорость роста, репродуктивные показатели и качество мяса [4, 8]. В различных породах овец, свиней, собак и кур определены мутации в некодирующих регуляторных областях, что влияет на уровень экспрессии MSTN, а следовательно, на рост и объём мышечной массы [9]. Изучалось влияние SNP в этом гене на живую массу в различных условиях выращивания и смертность цыплят [5].
Ранее нами уже были выявлены взаимосвязи между живой массой кур и заменой rs313744840 в гене миостатина [6, 8]. Животные, несущие аллель А по этой замене, обладали повышенной скоростью роста.
В проведенном исследовании курочки, выращенные на кормах для бройлеров, с генотипом АА превосходили по живой массе курочек с гетерозиготным генотипом AG (табл. 1). Можно предположить, что у гомозигот АА по изучаемой замене есть значительный потенциал для роста, который не всегда может быть реализован в полной мере на кормах для молодняка кур-несушек (табл. 2). В то же время гомозиготы АА, выращенные на разном корме, отличались друг от друга незначительно.
Заключение
Курочки с генотипом АА, выращиваемые на бройлерных кормах, начали достоверно (p < 0,05) отличаться от своих сверстниц с генотипом AG с возраста 28 дней. Это преимущество в росте сохранялось до конца периода кормления кормом с повышенным содержанием протеина и обменной энергии. Для курочек, выращенных на кормах для молодняка кур-несушек, тенденция к преимуществу по живой массе у гомозигот АА наблюдалась до 40-дневного возраста, но отмеченные различия не были достоверными. К возрасту 90 дней эта группа незначительно обогнала гетерозигот AG по живой массе, а от гомозигот GG практически не отличалась. Курочки с генотипом АА, выращенные на корме с повышенным содержанием протеина и обменной энергии, имели достоверно большую живую массу лишь в возрасте 34 дня и 40 дней. Использование корма с повышенным содержанием протеина и обменной энергии позволяет реализовать генетический потенциал птицы.
Данное исследование выполнено при финансовой поддержке ФАНО России в рамках ГЗ АААА-А18-118021590138-1 с использованием популяций кур из биоресурсной коллекции ЦКП «Генетическая коллекция редких и исчезающих пород кур» (ВНИИГРЖ, Санкт-Петербург – Пушкин).