Кровоподтеки кожи давно являются привычными исходами травм и некоторых медицинских процедур [6, 8, 9, 14]. Несмотря на то, что кожа в местах кровоподтеков и синяков воспаляется, теряет нормальную структуру и функцию, официальная медицина до сих пор не признает эту патологию самостоятельным заболеванием [11]. Поэтому отсутствует стандарт его лечения и не разработаны специальные отбеливающие лекарственные средства [12].
Однако в 2013 году ситуация кардинально изменилась, поскольку впервые было предложено выделить кровоподтеки кожи пациентов в местах инъекций в самостоятельное заболевание, которое получило название «Инъекционная болезнь кожи» [9, 11]. При этом специальные средства профилактики и лечения кровоподтеков до сих пор отсутствуют.
Тем не менее, в последние годы достигнуты значительные успехи в разработке чистящих, моющих и отбеливающих средств, которые находят широкое применение в быту в борьбе с загрязнениями унитазов, ванн, раковин и медицинских халатов различными биологическими тканями, включая пятна крови. Но данные гигиенические средства не пригодны для инъекций и аппликаций с целью отбеливания кожи в местах кровоподтеков, поскольку имеют чрезмерно высокую физико-химическую агрессивность, поскольку они способны вызвать газовую эмболию, некроз тканей и острое отравление, характерное для поверхностно активных веществ (ПАВ). Тем не менее, их состав может быть учтен для создания новой фармакологической группы лекарств – отбеливателей кровоподтеков. Дело в том, что аналогичный научный подход (обеспечение фармакологической активности за счет определенных физико-химических свойств растворов лекарственных средств) был успешно использован нами ранее при разработке новой фармакологической группы лекарств – пиолитических средств, которые способны эффективно разжижать не только густой гной, но и сгустки крови [1, 2, 3, 4, 5, 7, 13].
Цель исследования – разработать отбеливатель кровоподтеков кожи и подкожно-жировой клетчатки.
Материалы и методы исследования
Проведены лабораторные исследования с использованием стандартных ватно-марлевых тампонов и консервированной донорской крови. В опытах использовалась просроченная на 5 дней консервированная донорская кровь, которая перед опытами дополнительно разводилась водой для инъекций с целью гемолиза. Для этого за 10 минут до применения определенная порция крови разводилась дистиллированной водой в соотношении 1/5 при температуре + 25 °С. Сухие ватно-марлевые тампоны опускались на сухое дно чашек Петри так, чтобы плоскость тампонов располагалась горизонтально, после этого в центр каждого тампона вводилось по 3 капли гемолизированной крови. Затем тампоны инкубировались 10 минут при температуре + 25 °С.
После этого кровавые тампоны пропитывались исследуемыми растворами при температуре + 25 °С с помощью медицинского шприца, соединенного с инъекционной иглой, предназначенной для подкожных инъекций. Исследуемые растворы вводились в объеме 20 мл в центр каждого кровавого пятна в течение 60 секунд. Динамика изменения цвета тампонов регистрировалась с помощью цветной киносъемки, после чего полученные результаты воспроизводились на экране компьютера и анализировались с помощью специальной программы. При этом исследовалось газообразование, определялась площадь зоны полного обесцвечивания тампона и длительность времени, необходимого для обесцвечивания тампона.
Статистическая обработка результатов проведена с помощью программы BIOSTAT по общепринятой методике.
Результаты исследования
и их обсуждение
В качестве прототипов и аналогов нового фармакологического средства нами были использованы распространенные бытовые отбеливатели и средство, указанное в «Способе экспресс удаления пятен крови с одежды» [2]. Проведенный нами анализ состава указанных средств показал, что фармакологическое средство, претендующее на роль нового медицинского отбеливателя, вероятнее всего, должно включать следующие ингредиенты:
– натрия гидрокарбонат (то есть «съедобную» щелочь, а именно – питьевую соду);
– динатриевую соль ЭДТУ (то есть клещевидное соединение, комплексон);
– перекись водорода (химический аккумулятор кислорода).
При этом натрия гидрокарбонат – это самый безопасный естественный щелочной буфер, который обеспечивает щелочность плазмы крови. Натриевая соль ЭДТА (этилендиаминтетраацетат натрия) – это безопасный комплексон, который обеспечивает инактивацию ионов железа, освобождающихся после гемолиза эритроцитов и азрушения гемоглобина за счет его клещевидного «связывания». Перекись водорода – это самая безопасная неорганическая кислота, способная выделять молекулярный кислород под действием каталазы крови.
Перед проведением лабораторных исследований нами были проведены теоретические расчеты, направленные на обоснование состава и концентрации ингредиентов разрабатываемого отбеливателя. Анализ литературных данных показал, что разрабатываемый отбеливатель должен содержать натрия гидрокарбонат в концентрации 1,8 % и динатриевую соль ЭДТУ – в концентрации 0,25 %, поскольку именно такое их содержание обеспечивает осмотическую активность в пределах 285–295 мОсмоль/л воды, щелочность в пределах рН 8,4, а также умеренную буферную и комплексообразующую активность раствора при отсутствии токсичности и местного раздражающего действия.
Более трудной задачей оказалось выяснение требуемой концентрации перекиси водорода. Опираясь на наш прежний опыт разработки лекарственных средств, включающих перекись водорода, мы исходили из того, что концентрация перекиси водорода, обеспечивающая обесцвечивание крови без выделения газа, находится в диапазоне ниже 0,05 %. В связи с этим нами были проведены лабораторные исследования, направленные на конкретизацию искомого диапазона концентраций перекиси водорода. Для этого все испытуемые растворы содержали перекись водорода в диапазоне от 0,05 до 0,008 %.
Проведено 9 серий опытов с растворами, включающими 1,8 % натрия гидрокарбоната и 0,25 % динатриевой соли этилендиаминтетрауксусной кислоты, которые дополнительно содержали перекись водорода в концентрации (соответственно) 0,05 %, 0,04 %, 0,035 %, 0,03 %, 0,02 %, 0,015 %, 0,01 %, 0,0095 %, 0,009 или 0,008 %.
Растворы вводились в кровавые ватно-марлевые тампоны по единой схеме. При этом было установлено следующее.
В первой серии опытов центры кровавых пятен в тампонах красного цвета после введения в них раствора (содержащего 0,05 % Н2О2) начинали моментально светлеть с образованием пузырьков газа и пены. Образовавшиеся пузыри сохранялись в кровавой пене 10,3 ± 0,3 минут (Р ≤ 0,05, n = 5). При этом центр кровавого пятна практически полностью обесцвечивался, а площадь обесцвеченного участка составляла 64 ± 2,5 мм2 (Р ≤ 0,05, n = 5). Периферическая зона пятна крови при этом приобретала светло-желтый цвет.
Во второй серии опытов центры кровавых пятен в тампонах красного цвета после введения в них раствора (содержащего 0,04 % Н2О2) начинали светлеть моментально с образованием пузырьков газа и пены. Образовавшиеся пузыри сохранялись в кровавой пене 7 ± 0,1 минут (Р ≤ 0,05, n = 5), после чего образование пузырьков газа прекращалось. Центр кровавых пятен практически полностью был обесцвечен, а площадь обесцвеченного участка составляла в среднем 49 ± 2,0 мм2 (Р ≤ 0,05, n = 5). Периферическая зона пятна крови приобретала светло-желтый цвет.
В третьей серии опытов центры кровавых пятен в тампонах красного цвета после введения в него раствора (содержащего 0,035 % Н2О2) начинали моментально светлеть со слабым образованием пузырьков газа без пены. Образовавшиеся пузыри лопались и через 1,5 ± 0,08 минут (Р ≤ 0,05, n = 5) образование пузырьков газа прекращалось. При этом центры кровавых пятен оказывались бесцветными, а их площадь составляла в среднем 36 ± 0,9 мм2 (Р ≤ 0,05, n = 5). Периферическая зона пятен крови приобретала желтый цвет.
В четвертой серии опытов центр кровавых пятен в тампонах после введения в него раствора (содержащего 0,03 % Н2О2) начинал светлеть без образования пузырьков газа и пены практически моментально. Через 2 ± 0,1 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) центр кровавого пятна во всех тампонах был лишен красной окраски и оказался почти бесцветным (площадь его составила 29 ± 0,6 мм2 (Р ≤ 0,05, n = 5). Периферическая зона пятна крови приобретала желто-желто-оранжевый цвет.
В пятой серии опытов центры кровавых пятен в тампонах начинали быстро светлеть после введения испытуемого раствора (содержащего 0,02 % Н2О2) без образования пузырьков газа и пены. Уже через 4 ± 0,15 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) центр кровавых пятен был лишен красной окраски, стал бесцветным, а площадь его составила в среднем 19 ± 0,7 мм2 (Р ≤ 0,05, n = 5). Периферическая зона пятна крови в тампонах приобретала оранжево-желтый цвет.
В шестой серии опытов центры кровавых пятен в тампонах начинали светлеть после введения испытуемого раствора (содержащего 0,01 % Н2О2) без образования пузырьков газа и пены. Через 5 ± 0,19 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) центр кровавых пятен терял красный цвет и становился бесцветным, а площадь его составляла в среднем 14 ± 0,6 мм2 (Р ≤ 0,05, n = 5). Периферическая зона пятна крови приобретала оранжево-желтый цвет.
В седьмой серии опытов центры кровавых пятен в тампонах начинали светлеть после введения испытуемого раствора (содержащего 0,0095 % Н2О2) без образования пузырьков газа и пены. Через 6 ± 0,17 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) центр кровавых пятен терял красный цвет и становился бесцветным, а площадь его составляла 11 ± 0,5 мм2 (Р ≤ 0,05, n = 5). Периферическая зона пятна крови приобретала оранжевый цвет.
В восьмой серии опытов центры кровавых пятен в тампонах начинали светлеть после введения испытуемого раствора (содержащего 0,009 % Н2О2) без образования пузырьков газа и пены. Через 10 ± 0,3 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) центр кровавых пятен терял красный цвет и становился бесцветным, а площадь его составляла в среднем 9 ± 0,35 мм2 (Р ≤ 0,05, n = 5). Периферическая зона пятна крови приобретала красно-оранжевый цвет.
В девятой серии опытов центры кровавых пятен (имевшие красный цвет) после введения в них раствора (содержащего 0,008 % Н2О2) начинали светлеть без образования пузырьков газа и пены. Через 15 ± 0,8 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) они теряли цвет и становились бесцветными, а их площадь составляла в среднем 6 ± 0,15 мм2 (Р ≤ 0,05, n = 5). Периферическая зона пятна крови приобретала красно-оранжевый цвет.
Следовательно, водные растворы 1,8 % натрия гидрокарбоната и 0,25 % динатриевой соли этилендиаминтетрауксусной кислоты при внесении к ним перекиси водорода в диапазоне концентраций 0,05–0,03 % обесцвечивают кровавые тампоны, но с бурным и длительным образованием газа. Поэтому они не годятся для подкожных и внутрикожных инъекций.
Водные растворы 1,8 % натрия гидрокарбоната, 0,25 % динатриевой соли этилендиаминтетрауксусной кислоты и 0,03–0,01 % перекиси водорода эффективно и быстро обесцвечивают кровавые тампоны без образования газа. Следовательно, растворы именно такого состава более всего пригодны для обесцвечивания кровоподтеков. Они обеспечивают полное обесцвечивание окровавленных тампонов за 10–15 секунд без образования пузырьков газа и пены. Данное средство получило название «Отбеливатель кровоподтеков» (решение ФИПС от 28 октября 2014 года о выдаче патента на изобретение по заявке № 2014101094).
Изобретенный нами отбеливатель кровоподтеков состоит из следующих компонентов (в ас. %):
Натрия гидрокарбонат 1,8
Этилендиаминтетраацетат натрия 0,25
Перекись водорода 0,03–0,01
Вода для инъекций Остальное
Вслед за этим нами были проведены первичные испытания отбеливающего средства при внутрикожных инъекциях в области трупных пятен у 2-х трупов. Результаты проведенных исследований подтвердили высокую отбеливающую активность изобретенного «Отбеливателя кровоподтеков» при инъекциях в места трупных пятен без образования газа в тканях.
По нашему мнению поставленная цель достигается за счет следующих физико-химических факторов:
1. За счет водного изотонического раствора, обеспечивающего разбавление (разведение) межклеточной коллоидной жидкости с «красителем» и удаление его с собой при последующем всасывании в кровь;
2. За счет ощелачивающего окислителя, обеспечивающего размягчение, разрыхление межклеточной коллоидной среды и углубление в нее при одновременном ускорении процесса биотрансформации «красителя» без газовой эмболии и эмфиземы тканей;
3. За счет комплексообразователя, обеспечивающего конъюгацию и ускоряющего инактивацию органических и неорганических составных ингредиентов «красителя», а также растворимых и нерастворимых солей железа.
Водный раствор, состоящий из 1,8 % гидрокарбоната натрия, 0,25 % динатриевой соли этилендиамитетрауксусной кислоты и 0,03 – 0,01 % перекиси водорода представляет собой водный изотонический раствор с окислительной, комплексообразующей и щелочной активностью. Предложенный состав ингредиентов и соотношение их концентрации в водном растворе являются оптимальными для придания ему способности извлекать железо из его нерастворимых солей, замещать его при этом на растворимые соли натрия и образовывать хелатные (клещевидные) соединения с железом растворимых и нерастворимых солей железа без образования пузырьков газа и без оказания денатурирующего действия на клетки кожи и подкожно-жировой клетчатки, а также без общего токсического действия на человека, то есть без его отравления.
При этом катионы натрия и предложенное их суммарное количество в растворе обеспечивают условия биофизического (электрофизиологического) покоя для клеток, поскольку концентрация внеклеточных катионов натрия соответствует концентрации, сопровождающей электрофизиологический «потенциал покоя» в мембранах клеток нашего организма.
Гидрокарбонат натрия в предложенной концентрации создает собой аналог физиологического «гидрокарбонатного» буфера, являющегося основным буфером плазмы крови и внеклеточной жидкости человека, придает раствору стабильную щелочную активность в пределах рН 8,4, способность разжижать жир, кровь, межклеточную жидкость, лимфу, а также улучшает диффузию водного раствора в коже и в подкожно-жировой клетчатке, ускоряет рассасывание постинъекционного инфильтрата, появляющегося в тканях при внутрикожной и/или подкожной инъекции. При этом щелочной раствор не вызывает щелочной ожог тканей.
Динатриевая соль этилендиаминтетрауксусной кислоты в предложенной концентрации придает раствору способность связывать 2-х валентные катионы железа из раствора, а также извлекать железо из нерастворимых солей и связывать их за счет комплексообразования с ЭДТУ. Последующее удаление связанного железа из области кровоподтека с рассасывающимся раствором отбеливателя кровоподтеков уменьшает интенсивность окраски области кровоподтека.
Перекись водорода в предложенной концентрации придает раствору достаточную окислительную активность, но исключает образование пузырьков газа кислорода при инъекции раствора в кожу и/или в подкожно-жировую клетчатку в области кровоподтека, то есть исключает холодное кипение в тканях при инъекции в них.
Разработанный нами «Отбеливатель кровоподтеков» может быть введен в кожу и в подкожно-жировую клетчатку с помощью инъекций. Инъекционное введение средства в окрашенную зону кожи и/или подкожно-жировой клетчатки обеспечивает уменьшение интенсивности ее цвета за счет ускоренного окислительного разрушения восстановленного гемоглобина, метгемоглобина, вердохромогена, биливердинибилирубина и других «цветных» органических и неорганических соединений («красителей»). Необходимая окислительная трансформация цветных соединений обеспечивается выделением молекулярного кислорода из перекиси водорода на границе сред под действием каталазы крови в условиях оптимальной щелочной и осмотической активности. Кроме этого, раствор уменьшает интенсивность окраски тканей за счет своей разводящей, проникающей (за счет омыляющей активности) и промывающей активности, обеспеченных его изотонической и оптимальной щелочной активностью. Промывающая и проникающая активность раствора улучшает диффузию раствора в тканях в области кровоподтека и последующее всасывание раствора в общее кровеносное русло вместе с «красителями» из области инфильтрата, образованного инъекцией, за счет ускоренного рассасывания постинъекционного инфильтрата.